包涵體復(fù)性注意事項(xiàng)

1)zui適pH值范圍為8.0-9.0之間；

2)溫度適宜選擇4℃；

3)復(fù)性過程蛋白濃度不宜過大，一般為0.1-0.2mg/mL；

4)復(fù)性時間一般為24-36小時；

5)低分子化合物如L-Arg有助于增加復(fù)性中間產(chǎn)物的溶解度；脲、鹽酸胍、烷基脲、以及碳酸酰胺類等，在非變性濃度下是很有效的促進(jìn)劑，都可阻止蛋白聚集；Tris對蛋白質(zhì)復(fù)性有促進(jìn)作用；EDTA可以防止蛋白降解；

6)首先要獲得較高純度的包涵體；

7)包涵體溶解要*，一般應(yīng)使溶解液體量較大，不要怕蛋白被稀釋，要有助溶措施；

8)透析前后均要離心；

9)包含體要*洗滌干凈，洗滌液中加入適量Triton-X100；

10)包含體溶解后裝入透析袋在復(fù)性液中復(fù)性；

11)復(fù)性完畢在低濃度的緩沖液中連續(xù)緩慢透析12-24h；

12)復(fù)性率的測定時要據(jù)變性蛋白和非變性蛋白的光學(xué)性質(zhì)不同測定

13)TritionX100、SDS這一類去垢劑zui后不易去除，在制藥行業(yè)中一般不允許采用。用Triton洗滌有些包涵體效果不是很好。包涵體洗滌是純化極為重要的一步，改變培養(yǎng)條件，再洗滌包涵體，有時可以在上柱前已經(jīng)只剩下3-4條雜帶，這樣后續(xù)的純化就很方便了。

14)復(fù)性時的蛋白濃度一般為0.1-1mg/ml，太高的濃度容易形成聚體沉淀，太低的濃度不經(jīng)濟(jì)，而且很多蛋白在低濃度時不穩(wěn)定，很容易變性。

包涵體復(fù)性常見問題分析

包涵體復(fù)性原則

低濃度，平緩梯度，低溫。

怎樣洗滌包涵體？
通常的洗滌方法一般是洗不干凈的，可以先把包涵體用6M鹽酸胍溶解充分，過濾除去未溶解的物質(zhì)，注意留樣跑電泳，然后用水稀釋到4M,離心把沉淀和上清分別跑電泳，如此類推可以一直稀釋到合適的濃度，可以找到一個合適去除雜質(zhì)的辦法，其實(shí)這就是梯度沉淀的方法，比通常的直接洗脫效果好。

對于尿素和鹽酸胍該怎么選擇

尿素和鹽酸胍屬中強(qiáng)度變性劑，易經(jīng)透析和超濾除去。它們對包涵體氫鍵有較強(qiáng)的可逆性變性作用，所需濃度尿素8-10M，鹽酸胍6-8M。尿素溶解包涵體較鹽酸胍慢而弱，溶解度為70-90%，尿素在作用時間較長或溫度較高時會裂解形成氰酸鹽，對重組蛋白質(zhì)的氨基進(jìn)行共價修飾，但用尿素溶解具有不電離，呈中性，成本低，蛋白質(zhì)復(fù)性后除去不會造成大量蛋白質(zhì)沉淀以及溶解的包涵體可選用多種色譜法純化等優(yōu)點(diǎn)，故目前已被廣泛采用。
鹽酸胍溶解能力達(dá)95%以上，且溶解作用快而不造成重組蛋白質(zhì)的共價修飾。但它也有成本高、在酸性條件下易產(chǎn)生沉淀、復(fù)性后除去可能造成大量蛋白質(zhì)沉淀和對蛋白質(zhì)離子交換色譜有干擾等缺點(diǎn)。

8M尿素溶解的包涵體溶液應(yīng)如何保存?

在4度放置半個月，都沒什么問題。在室溫放置超過48小時，可能會對目的蛋白有影響，因?yàn)槟蛩卦趬A性條件下可使一些氨基酸?；?，所以早些處理BI溶液比較好。

復(fù)性時的蛋白濃度是？

一般使用濃度為0.1-1mg/ml，太高的濃度容易形成聚體沉淀，太低的濃度不經(jīng)濟(jì)，而且很多蛋白在低濃度時不穩(wěn)定，很容易變性。

蛋白復(fù)性后濃度低

蛋白可能是在復(fù)性的過程中發(fā)生降解了。
可以將復(fù)性好的蛋白濃縮一下跑膠看看。復(fù)性過程一般都是低濃度蛋白，需要保證分子間有足夠的折疊空間。一些未正確折疊的蛋白就存在于沉淀中，可能沉淀看不出來，復(fù)性后的蛋白高速離心看看。

復(fù)性中蛋白析出是怎么回事？該怎么處理？

出現(xiàn)蛋白析出，肯定是條件變化太劇烈了。
復(fù)性應(yīng)該采取復(fù)性液濃度和PH值逐漸變化的方法，例如根據(jù)包涵體的溶液成分，每隔1個PH或濃度值配置一種溶液，逐步透析到正常。此外透析時必須濃度極低，條件溫和，使蛋白質(zhì)能夠正確折疊。但是復(fù)性的比率應(yīng)該很低。
若加變性劑尿素可加到2M，鹽酸胍可加到1-1.5M；
另外可將甘油濃度增加，范圍可在≤30%，且在復(fù)性樣品中也可加適量甘油。

復(fù)性效果的檢測

根據(jù)具體的蛋白性質(zhì)和需要，可以從生化、免疫、物理性質(zhì)等方面對蛋白質(zhì)的復(fù)性效率進(jìn)行檢測。

1，凝膠電泳：一般可以用非變性的聚丙烯酰胺凝膠電泳可以檢測變性和天然狀態(tài)的蛋白質(zhì)，或用非還原的聚丙烯酰胺電泳檢測有二硫鍵的蛋白復(fù)性后二硫鍵的配對情況。

2，光譜學(xué)方法：可以用紫外差光譜、熒光光譜、圓二色性光譜（CD）等，利用兩種狀態(tài)下的光譜學(xué)特征進(jìn)行復(fù)性情況的檢測，但一般只用于復(fù)性研究中的過程檢測。

3，色譜方法：如IEX、RP-HPLC、CE等，由于兩種狀態(tài)的蛋白色譜行為不同，

4，生物學(xué)活性及比活測定：一般用細(xì)胞方法或生化方法進(jìn)行測定，較好的反映了復(fù)性蛋白的活性，值得注意的是，不同的測活方法測得的結(jié)果不同，而且常常不能*反映體內(nèi)活性。

5，黏度和濁度測定：復(fù)性后的蛋白溶解度增加，變性狀態(tài)時由于疏水殘基暴露，一般水溶性很差，大多形成可見的沉淀析出。

6，免疫學(xué)方法：如ELISA、WESTERN等，特別是對結(jié)構(gòu)決定簇的抗體檢驗(yàn)，比較真實(shí)的反映了蛋白質(zhì)的折疊狀態(tài)。

變性的融合蛋白可以制備多抗或者單抗嗎？

變性蛋白只是天然蛋白伸直的了產(chǎn)物，用來免疫動物具有更強(qiáng)的抗原性。只是天然蛋白中被包在內(nèi)部的抗原決定簇也會暴露出來，如果用該變性抗原制備的抗體來檢測變性抗原是可以的，如果用來檢測天然蛋白，可能會有假陽性。做單抗也可以，同樣道理，篩選出的單抗可能對抗的抗原決定簇處于天然抗原的內(nèi)部，是否能用還要看將來該單抗用來干什么。

純化后的可溶性融合蛋白可以直接用于制備多抗嗎？

免疫動物要求抗原體種盡量小。在這種小體積的情況下，緩沖液里的小分子成分只要沒毒影響就不大，可以不用考慮。